Том 37, номер 06, статья № 4

Сафатов А. С., Лаптева Н. А., Олькин С. Е., Андреева И. С., Буряк Г. А., Ребус М. Е., Резникова И. К., Аликина Т. Ю., Батурина О. А., Кабилов М. Р. Зависимость концентрации культивируемых микроорганизмов и суммарного белка от метеоусловий в окрестностях г. Новосибирска. // Оптика атмосферы и океана. 2024. Т. 37. № 06. С. 468–474. DOI: 10.15372/AOO20240604.
Скопировать ссылку в буфер обмена
Аннотация:

По результатам трехлетних измерений проведено исследование зависимости концентрации культивируемых микроорганизмов и суммарного белка от метеопараметров: направления и скорости ветра, солнечной радиации, температуры, атмосферного давления, относительной и абсолютной влажности. Отбор проб осуществлялся на площадке ФБУН ГНЦ ВБ «Вектор» Роспотребнадзора (р.п. Кольцово Новосибирской области) с одновременной фиксацией метеоусловий. Концентрацию суммарного белка определяли методом флуоресценции реагента, связывающегося с белком, а концентрацию культивируемых микроорганизмов – стандартными культуральными методами. Метеоданные поступали с метеопоста, расположенного вблизи точки пробоотбора. Анализ данных показывает, что концентрации биологических компонент в аэрозоле растут с увеличением средних температуры, абсолютной влажности и освещенности в течение пробоотбора и снижаются с ростом средних значений относительной влажности, скорости ветра и атмосферного давления.

Ключевые слова:

биоаэрозоли, концентрация культивируемых микроорганизмов, концентрация суммарного белка, метеопараметры

Список литературы:

1. Bioaerosols / C.S. Cox, C.M. Waters (eds.). Boca Raton, London, Tokyo: CRC Press, Lewis Publ., 1995. 621 p.
2. Shrivastava M., Cappa C.D., Fan J., Goldstein A.H., Guenther A.B., Jimenez J.L., Kuang C., Laskin A., Martin S.T., Ng N.L., Petaja T., Pierce J.R., Rasch P.J., Roldin P., Seinfeld J.H., Shilling J., Smith J.N., Thornton J.A., Volkamer R., Wang J., Worsnop D.R., Zaveri R.A., Zelenyuk A., Zhang Q. Recent advances in understanding secondary organic aerosol: Implications for global climate forcing // Rev. Geophys. 2017. V. 55, N 2. P. 509–559. DOI: 10.1002/2016RG000540.
3. Fröhlich-Nowoisky J., Kampf C.J., Weber B., Huffman J.A., Pöhlker C., Andreae M.O., Lang-Yona N., Burrows S.M., Gunthe S.S., Elbert W., Su H., Hoor P., Thines E., Hoffmann T., Després V.R., Pöschl U. Bioaerosols in the Earth system: Climate, health, and ecosystem interactions // Atmos. Res. 2016. V. 182. P. 346–376. DOI: 10.1016/j.atmosres.2016.07.018.
4. Després V.R., Huffman J.A., Burrows S.M., Hoose C., Safatov A.S., Buryak G., Fröhlich-Nowoisky J., Elbert W., Andreae M.O., Pöschl U., Jaenicke R. Primary biological aerosols in the atmosphere: Observations and relevance // Tellus B. 2012. V. 64. P. 1–58. DOI: 10.3402/tellusb.v64i0.15598.
5. Huang S., Hu W., Chen J., Wu Z., Zhang D., Fu P. Overview of biological ice nucleating particles in the atmosphere // Environ. Int. 2021. V. 146. DOI: 10.1016/j.envint.2020.106197.
6. Freitas G.P., Stolle C., Kaye P.H., Stanley W., Herlemann D.P.R., Salter M.E., Zieger P. Emission of primary bioaerosol particles from Baltic seawater // Environ. Sci.: Atmos. 2022. V. 2. DOI: 10.1039/D2EA00047D.
7. Gladding T.L., Rolph C.A., Gwyther C.L., Kinnersley R., Walsh K., Tyrrel S. Concentration and composition of bioaerosol emissions from intensive farms: Pig and poultry livestock // J. Environ. Manag. 2020. V. 272. DOI: 10.1016/j.jenvman.2020. 111052.
8. Li W., Liu L., Xu L., Zhang J., Yuan Q., Ding X., Hu W., Fu P., Zhang D. Overview of primary biological aerosol particles from a Chinese boreal forest: Insight into morphology, size, and mixing state at microscopic scale // Sci. Total Environ. 2020. V. 719. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2020.137520.
9. Moore R.A., Bomar C., Kobziar L.N., Christner B.C. Wildland fire as an atmospheric source of viable microbial aerosols and biological ice nucleating particles // ISME J. 2021. V. 15. P. 461–472. DOI: 10.1038/s43705-022-00089-5.
10. Pumkaeo P., Iwahashi H. Bioaerosol sources, sampling methods, and major categories: A comprehensive overview // Rev. Agric. Sci. 2020. V. 8. P. 261–278. DOI: 10.7831/ras.8.0_261.
11. Santander M.V., Schiffer J.M., Lee C., Axson J.L., Tauber M.J., Prather K.A. Factors controlling the transfer of biogenic organic species from seawater to sea spray aerosol // Sci. Rep. 2022. V. 12. DOI: 10.1038/s41598-022-07335-9.
12. Vettikkat L., Miettinen P., Buchholz A., Rantala P., Yu H., Schallhart S., Petäjä T., Seco R., Männistö E., Kulmala M., Tuittila E.-S., Guenther A.B., Schobesberger S. High emission rates and strong temperature response make boreal wetlands a large source of isoprene and terpenes // Atmos. Chem. Phys. 2023. V. 23. P. 2683–2698. DOI: 10.5194/acp-23-2683-2023.
13. Warren S.D., St. Clair L.L., Stark L.R., Lewis L.A., Pombubpa N., Kurbessoian T., Stajich J.E., Aanderud Z.T. Reproduction and dispersal of biological soil crust organisms // Front. Ecol. Evol. 2019. V. 7. DOI: 10.3389/FEVO.2019.00344.
14. Chen X., Kumari D., Acha V. A review on airborne microbes: The characteristics of sources, pathogenicity, and geography // Atmos. 2020. V. 11. DOI: 10.3390/ATMOS11090919.
15. Cáliz J., Triadó-Margarit X., Camarero L., Casamayor E.O. A long-term survey unveils strong seasonal patterns in the airborne microbiome coupled to general and regional atmospheric circulations // PNAS. 2018. V. 115, N 48. P. 12229–12234. DOI: 10.1073/PNAS.1812826115.
16. Chen N.-T., Cheong N.-S., Lin C.-Y., Tseng C.-C., Su H.-J. Ambient viral and bacterial distribution during long-range transport in Northern Taiwan // Environ. Pollut. 2021. V. 270. DOI: 10.1016/j.envpol.2020.116231.
17. Els N., Larose C., Baumann-Stanzer K., Tignat-Perrier R., Keuschnig C., Vogel T.M., Sattler B. Microbial composition in seasonal time series of free tropospheric air and precipitation reveals community separation // Aerobiologia. 2019. V. 35. P. 671–701. DOI: 10.1007/s10453-019-09606-x.
18. Maki T., Noda J., Morimoto K., Aoki K., Kurosaki Y., Huang Z., Chen B., Matsuki A., Miyata H., Mitarai S. Long-range transport of airborne bacteria over East Asia: Asian dust events carry potentially nontuberculous Mycobacterium populations // Environ. Int. 2022. V. 168. DOI: 10.1016/j.envint.2022.107471.
19. Mayol E., Arrieta J.M., Jiménez M.A., Martínez-Asensio A., Garcias-Bonet N., Dachs J., González-Gaya B., Royer S.-J., Benítez-Barrios V.M., Fraile-Nuez E., Duarte C.M. Long-range transport of airborne microbes over the global tropical and subtropical ocean // Nature Commun. 2017. V. 8. DOI: 10.1038/s41467-017-00110-9.
20. Pickersgill D.A., Müller H., Després V.R. Advanced methods for spatial analysis of bioaerosol long-range transport processes // Geospatial Analyses of Earth Observation (EO) data / A. Pepe, Q. Zhao (eds.). 2019. Chapter 4. DOI: 10.5772/intechopen.86132.
21. Romano S. Bioaerosols: Composition, meteorological impact, and transport // Atmos. 2023. V. 14, N 3. DOI: 10.3390/ATMOS14030590.
22. Smith D.J., Jaffe D.A., Birmele M.N., Griffin D.W., Schuerger A.C., Hee J., Roberts M.S. Free tropospheric transport of microorganisms from Asia to North America // Microb. Ecol. 2012. V. 64. P. 973–985. DOI: 10.1007/s00248-012-0088-9.
23. Warren S.D., St. Clair L.L. Atmospheric transport and mixing of biological soil crust microorganisms // AIMS Environ. Sci. 2021. V. 8, N 5. P. 498–516. DOI: 10.3934/environsci.2021032.
24. Jiang G., Ma J., Wang C., Wang Y., Laghari A.A. Kinetics and mechanism analysis on self-decay of airborne bacteria: Biological and physical decay under different temperature // Sci. Total Environ. 2022. V. 832. DOI: 10.1016/j.scitotenv.2022.155033.
25. Barnes N.M., Wu H. Mechanisms regulating the airborne survival of Klebsiella pneumoniae under different relative humidity and temperature levels // Indoor Air. 2022. V. 32, N 2. DOI: 10.1111/ina.12991.
26. Chang C.-W., Lin M.-H., Huang S.-H., Horng Y.-J. Parameters affecting recoveries of viable Staphylococcus aureus bioaerosols in liquid-based samplers // J. Aerosol Sci. 2019. V. 136. P. 82–90. DOI: 10.1016/j.jaerosci.219.06.007.
27. Handler F.A. Predicting inactivation of Bacillus subtilis spores exposed to broadband and solar ultraviolet light // Environ. Eng. Sci. 2019. V. 36, N 6. P. 667–680. DOI: 10.1089/ees.2018.0404.
28. Madronich S., Björn L.O., McKenzie R.L. Solar UV radiation and microbial life in the atmosphere // Photochem. Photobiol. Sci. 2018. V. 17. P. 1918–1931. DOI: 10.1039/c7pp00407a.
29. Oswin H.P., Haddrell A.E., Hughes C., Otero-Fernandez M., Thomas R.J., Reid J.P. Oxidative stress contributes to bacterial airborne loss of viability // Microbiol. Spectr. 2023. V. 11, N 2. DOI: 10.1128/spectrum.03347-22.
30. Peccia J., Werth H.M., Miller S., Hernandez M. Effects of relative humidity on the ultraviolet induced inactivation of airborne bacteria // Aerosol Sci. Technol. 2001. V. 35, N 3. P. 728–740. DOI: 10.1080/02786820152546770.
31. Brown A.D. The survival of airborne microorganisms. III. Effects of temperature // Australian J. Biol. Sci. 1954. V. 7, N 4. P. 444–451. DOI: 10.1071/bi9540444.
32. Huang Z., Yu X., Liu Q., Maki T., Alam K., Wang Y., Xue F., Tang S., Du P., Dong Q., Wang D., Huang J. Bioaerosols in the atmosphere: A comprehensive review on detection methods, concentration and influencing factors // Sci. Total Environ. 2024. V. 912. DOI: 10.1016/ j.scitotenv.2023.168818.
33. Krueger A.P., Smith R.F., Go I.G. The action of air ions on bacteria. I. Protective and lethal effects on suspensions of staphylococci in droplets // J. Gen. Physiol. 1957. V. 41, N 2. P. 359–381. DOI: 10.1085/jgp.41.2.359.
34. Sinha R.P., Häder D.-P. UV-induced DNA damage and repair: A review // Photochem. Photobiol. Sci. 2002. V. 1, N 4. P. 225–236. DOI: 10.1039/b201230h.
35. Shoshanim O., Baratz A. A new fluorescence-based methodology for studying bioaerosol scavenging processes using a hyperspectral LIF-LIDAR remote sensing system // Environ. Res. 2023. V. 217. DOI: 10.1016/j.envres.2022.114859.
36. You W.W., Haugland R.P., Ryan D.K., Haugland R.P. 3-(4-Carboxybenzoyl)quinoline-2-carboxaldehyde, a reagent with broad dynamic range for the assay of proteins and lipoproteins in solution // Annal. Biochem. 1997. V. 244, N 2. P. 277–282. DOI: 10.1006/abio.1996.9920.
37. Andreeva I.S., Safatov A.S., Morozova V.V., Solovyanova N.A., Puchkova L.I., Buryak G.A., Olkin S.E., Reznikova I.K., Emelyanova E.K., Okhlopkova O.V., Simonenkov D.V., Belan B.D. Composition and concentration of the biogenic components of the aerosols collected over Vasyugan marshes and Karakan pine forest at altitudes from 500 to 7000 m // Atmosphere. 2023. V. 14. DOI: 10.3390/atmos14020301.
38. Андреева И.С., Батурина О.А., Сафатов А.С., Соловьянова Н.А., Аликина Т.Ю., Пучкова Л.И., Ребус М.Е., Буряк Г.А., Олькин С.Е., Козлов А.С., Кабилов М.Р. Концентрация и состав культивируемых микроорганизмов в аэрозолях атмосферного воздуха г. Новосибирска в зависимости от сезона года // Оптика атмосф. и океана. 2022. Т. 35, № 6. С. 465–470. DOI: 10.15372/AOO20220605; Andreeva I.S., Baturina O.A., Safatov A.S., Solovyanova N.A., Alikina T.Y., Puchkova L.I., Rebus M.E., Buryak G.A., Olkin S.E., Kozlov A.S., Kabilov M.R. Concentration and composition of cultured microorganisms in atmospheric air aerosols in Novosibirsk depending on the season // Atmos. Ocean. Opt. 2022. V. 35, N 6. P. 667–672. DOI: 10.1134/S1024856022060045.
39. Ашмарин И.П., Воробьев А.А. Статистические методы в микробиологических исследованиях. Л.: Гос. изд. мед. лит., 1962. 180 c.
40. Harrison R.M., Jones A.M., Biggins P.D.E., Pomeroy N., Cox C.S., Kidd S.P., Hobman J.L., Brown N.L., Beswick A. Climate factors influencing bacterial count in background air samples // Sci. Total Environ. 2005. V. 326. P. 151–180. DOI: 10.1007/s00484-004-0225-3.
41. Lighthart B. Mini-review of the concentration variations found in the alfresco atmospheric bacterial pollution // Aerobiol. 2000. V. 16, N 1. P. 7–16. DOI: 10.1023/A:1007694618888.
42. Tang J.W. The effect of environmental parameters on the survival of airborne infectious agents // J. R. Soc. Interface. 2009. V. 6, suppl. 6. P. S737–S746. DOI: 10.1098/rsif.2009.0227.focus.
43. Chang C.-W., Li S.-Y., Huang S.-H., Huang C.-K., Chen Y.-Y., Chen C.-C. Effects of ultraviolet germicidal irradiation and swirling motion on airborne Staphylococcus aureus, Pseudomonas aeruginosa and Legionella pneumophila under various relative humidities // Indoor Air. 2012. V. 23, N 1. P. 74–84. DOI: 10.1111/j.1600-0668.2012.00793.x.
44. Davis M.S., Bateman B. Relative humidity and the killing of bacteria. 1. Observations on Escherichia coli and Micrococcus lysodeikticus // J. Bact. 1960. V. 80, N 5. P. 577–579. DOI: 10.1128/jb.80.5.577-579.1960.
45. Сафатов А.С., Андреева И.С., Анкилов А.Н., Бакланов А.М., Белан Б.Д., Бородулин А.И., Буряк Г.А., Иванова Н.А., Куценогий К.П., Макаров В.И., Марченко В.В., Марченко Ю.В., Олькин С.Е., Панченко М.В., Петрищенко В.А., Пьянков О.В., Резникова И.К., Сергеев А.Н. Доля биогенной компоненты в атмосферном аэрозоле на юге Западной Сибири // Оптика атмосф. и океана. 2003. Т. 16, № 5–6. С. 532–536.